Laboratorio de recursos compartidos reconocido por ISAC

Qué hacemos

El Recurso Compartido de Análisis de Flujo e Inmune (FIASR) ofrece una gama completa de tecnologías de vanguardia en diversas plataformas, incluyendo citometría de flujo e imagen, proteómica, metabolómica y técnicas de perfilado espacial, para apoyar a los investigadores de Roswell. El FIASR cuenta con el reconocimiento de la Sociedad Internacional para el Avance de la Citometría (ISAC) por su excelencia operativa y su adhesión a las mejores prácticas. El Recurso Compartido se compromete a ampliar el acceso a tecnologías únicas y al uso de instrumentación avanzada, a la vez que mantiene un programa activo para educar a la comunidad científica sobre aplicaciones innovadoras.

Enlaces rápidos

Instrumentos

Enlaces Útiles

Analizadores de citometría de flujo

Los analizadores de citometría de flujo están disponibles 24 horas al día, 7 días a la semana para los usuarios de Trinaed reservando tiempo en el calendario de FOM.

Fortaleza A, B y C
  • 3L, 16 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión
  • Opción de muestreador de alto rendimiento (placa de 96 pocillos)

Láser

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser violeta de 405 nm

V450 / 50

BV421, BV480, DAPI, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V525 / 50

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

V560 / 20

Qdot565, BV570

V585 / 15

BV570

V610 / 20

BV605

V660 / 20

BV650

V710 / 50

BV711

V780 / 60

BV750, BV786, BV785

Láser azul de 488 nm

B530 / 30

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

B575 / 26

PE, naranja, AF568

B610 / 20

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, PI

B695 / 40

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5 7AAD, PEeFluor710

B780 / 60

PECy5, PEAF750

Láser rojo de 640 nm

R670 / 14

Vehículo blindado de transporte de personal, AF647

R730 / 45

AF700, APC-R700, DRAQ5

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

Fortaleza A, B y C
  • 4L, 18 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión
  • Opción de muestreador de alto rendimiento (placa de 96 pocillos)

Láser

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 355 nm

U379 / 28

BUV395, Indo-1

U460 / 14

DAPI, Hoechst 33342, LD Azul, UV Zombie

U740 / 35

BUV737

Láser violeta de 405 nm

V450 / 50

BV421, BV480, DAPI, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V525 / 50

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

V585 / 15

BV570

V610 / 20

BV605

V660 / 20

BV650

V710 / 50

BV711

V780 / 60

BV750, BV786, BV785

Láser azul de 488 nm

B530 / 30

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

B575 / 26

PE, naranja, AF568

B610 / 20

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, PI

B695 / 40

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, 7AAD

B780 / 60

PECy7, PEAF750

Láser rojo de 640 nm

R670 / 14

Vehículo blindado de transporte de personal, AF647

R730 / 45

AF700, APC-R700, DRAQ5

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

Fortaleza A, B y C
  • 4L, 18 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión

Láser

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 355 nm

U379 / 28

BUV395, Indo-1

U460 / 14

DAPI, Hoechst 33342, LD Azul, UV Zombie

U740 / 35

BUV737

Láser violeta de 405 nm

V450 / 50

BV421, BV480, DAPI, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V525 / 50

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

V585 / 15

BV570

V610 / 20

BV605

V670 / 30

BV650

V710 / 50

BV711

V780 / 60

BV750, BV786, BV785

Láser azul de 488 nm

B530 / 30

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

B575 / 26

PE, naranja, AF568

B610 / 20

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, PI

B710 / 50

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5, 7AAD, PEeFluor710

B780 / 60

PECy7, PEAF750

Láser rojo de 640 nm

R670 / 30

Vehículo blindado de transporte de personal, AF647

R710 / 50

AF700, APC-R700, DRAQ5

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

Symphony A3 - Máquina de citometría de flujo
  • 5L, 23 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión
  • Opción de muestreador de alto rendimiento (placa de 96 pocillos)

Láser

Filtro de paso de banda

Etiquetas fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 349 nm

UV379/29

BUV395, Spark UV 387, SBUV400

UV515/30

DAPI, BUV496, LD Azul, Zombie UV, SBUV510

UV586/15

BUV563, SBUV575, cFluor UV570

UV673/30

BUV661, SBUV665, cFluor UV670

UV740/35

BUV737, SBUV740, cFluor UV740

UV820/60

BUV805, SBUV795, cFluor UV790

Láser ultravioleta de 405 nm

V431 / 28

BV421, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V525 / 30

BV510, V500, AmCyan, Pac Orange, LD Aqua

V610 / 20

BV605, SBV600, cFluor V605, cFluor V610

V670 / 30

BV650

V710 / 50

BV711, SBV702, cFluor V715

V780 / 60

BV750, BV786, BV785, SBV780, cFluor V780

Láser azul de 488 nm

B515 / 20

FITC, BB515, GFP, AF488, cFluor B532, CFSE

B610 / 20

BB630, RB613, NovaBlue610

B710 / 50

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, RB670, cFluor B690

B780 / 60

BB790, RB780, NovaBlue 760, NovaBlue 800

Láser amarillo/verde de 561 nm

YG586/15

PE, RFP, tdTomato AF568, BYG584, cFluor BYG575

YG610/20

PECF594, PEDazzle594, PEeFluor610, PI, mCherry

YG670/30

PECy5, PECy5.5, NovaYellow 690, 7AAD

YG780/60

PECy7, NovaYellow 810, cFluor BYG781

Láser rojo de 637 nm

R670 / 14

APC, AF647, cFluor R659, LD Rojo lejano

R730 / 45

AF700, APC-R700, cFluor R720

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7, cFluor R780

Aurora A, B y C
  • 5L, 64 detectores, más de 40 parámetros fluorescentes con 3 parámetros de dispersión (FSC (488 nm), SSC (405 nm), SSC-B (488 nm)
  • Aurora C tiene opción de muestreador de alto rendimiento (placa de 96 pocillos o 40 tubos)

Láser

Channel

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 355 nm

UV1

NUV373/15

UV2

NUV388/15

BUV395

UV3

NUV428/15

UV4

NUV443/15

UV5

NUV458/15

UV6

NUV473/15

UV7

NUV542/28

BUV496

UV8

NUV542/28

UV9

NUV582/31

BUV563

UV10

NUV613/31

UV11

NUV664/27

BUV661

UV12

NUV692/28

UV13

NUV720/29

BUV737

UV14

NUV750/30

UV15

NUV780/30

UV16

NUV812/34

BUV805

Láser violeta de 405 nm

V1

V428 / 15

BV421

V2

V443 / 15

AF405, SB436

V3

V458 / 15

PacBlue, eFluor450

V4

V473 / 15

BV480

V5

V508 / 20

eFluor506

V6

V525 / 17

V7

V542 / 17

BV510

V8

V581 / 19

BV570, Pac-Orange

V9

V598 / 20

V10

V615 / 20

BV605, SB600

V11

V664 / 27

BV650, SB645

V12

V692 / 28

V13

V720 / 29

BV711, SB702

V14

V750 / 30

BV750

V15

V780 / 30

BV785, BV786

V16

V812 / 34

Láser azul de 488 nm

B1

B508 / 20

BB515

B2

B525 / 17

Ficha técnica, AF488

B3

B542 / 17

AF532

B4

B581 / 19

B5

B598 / 20

B6

B615 / 20

B7

B661 / 17

B8

B679 / 18

por CP

B9

B697 / 19

BB700, por CPCy5.5

B10

B717 / 20

PerCP-eFluor710

B11

B738 / 21

B12

B760 / 23

B13

B783 / 23

B14

B812 / 34

Láser amarillo/verde de 561 nm

YG1

YG577/20

PE

YG2

YG598/20

YG3

YG615/20

PEDazzle594, PECF594, PE-AF610, PE-eFluor610

YG4

YG661/17

YG5

YG679/18

PECy5

YG6

YG697/19

YG7

YG720/29

PECy5.5, PE-AF700

YG8

YG750/30

YG9

YG780/30

PECy7

YG10

YG812/34

Láser rojo de 638 nm

R1

R661 / 17

APC

R2

R679 / 18

AF647, eFluor660

R3

R697 / 19

R4

R717 / 20

AF700, APC-R700

R5

R738 / 21

R6

R760 / 23

R7

R783 / 23

APCCy7, APCH7, APC-AF750, APCFire750

R8

R812 / 34

fluorocromo

Filtro disponible

Flujo de calcio

405/20

Población lateral

645LP

YFP

546/20

Citómetros de flujo para obtención de imágenes

ImageStream Mk II
  • 5L, hasta 10 parámetros fluorescentes con dos imágenes de campo claro
  • Instrumento de 12 canales y 2 cámaras
  • Dispersión lateral en el canal 6 o canal 12 (láser de dispersión dedicado de 785 nm)
  • Aumento de 20x, 40x, 60x
  • Profundidad de campo extendida (EDF, 16 µ) y opción de muestreador automático (formato de placa de 96 pocillos)

1 cámara

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

488 nm azul
561 nm amarillo/verde
592 nm naranja

Canal 1: 420-480 nm

Campo Claro

Canal 2: 480-560 nm

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

Canal 3: 560-595 nm

Educación Física, AF568

Canal 4: 595-642 nm

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, AF594

Canal 5: 642-745 nm

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5, 7AAD, PEeFluor710

Canal 6: 745-800 nm

PECy7, PEAF750

2 cámara

Filtro de paso de banda

Violeta de 405 nm
640 nm rojo

Canal 7: 420-505 nm

BV421, BV480, DAPI, azul Pacífico, V450, LD violeta

Canal 8: 505-570 nm

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

Canal 9: 570-595 nm

Campo Claro

Canal 10: 595-642 nm

BV605

Canal 11: 642-745 nm

AF647, vehículo blindado

Canal 12: 745-800 nm

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

ImageStream Mk II
  • 4L, hasta 10 parámetros fluorescentes con dos imágenes de campo claro
  • Instrumento de 12 canales y 2 cámaras
  • Dispersión lateral en el canal 6 o canal 12 (láser de dispersión dedicado de 785 nm)
  • Aumento de 20x, 40x, 60x

1 cámara

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

488 nm azul
561 nm amarillo/verde

Canal 1: 420-480 nm

Campo Claro

Canal 2: 480-560 nm

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

Canal 3: 560-595 nm

Educación Física, AF568

Canal 4: 595-642 nm

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, AF594

Canal 5: 642-745 nm

PERCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5, 7AAD, PEeFluor710

Canal 6: 745-800 nm

PECy7, PEAF750

2 cámara

Filtro de paso de banda

Violeta de 405 nm
640 nm rojo

Canal 7: 420-505 nm

BV421, BV480, DAPI, azul Pacífico, V450, LD violeta

Canal 8: 505-570 nm

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

Canal 9: 570-595 nm

Campo Claro

Canal 10: 595-642 nm

BV605

Canal 11: 642-745 nm

AF647, vehículo blindado

Canal 12: 745-800 nm

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

Clasificación celular activada por fluorescencia (FACS)

FIASR cuenta con dos clasificadores de células en una instalación BSL2+. Uno está disponible para la clasificación asistida por el operador y el otro está disponible para su uso las 24 horas del día, los 7 días de la semana, para usuarios capacitados que reserven tiempo en el calendario de FOM.

Clasificación asistida por operador: Los investigadores llevan suspensiones de células individuales teñidas al centro de recursos con controles, soluciones tampón y tubos de recolección. Junto con el operador, se configura el experimento y se define la lógica de clasificación. Después de la configuración, los investigadores no necesitarán estar presentes durante el resto de la clasificación.

Nuevos tipos: Envíe el en línea Formulario de clasificación de información Para solicitar una cita, los operadores del FACS se comunicarán con usted para confirmar su cita y discutir los detalles.

Ordenamientos repetidos: Envía el corto Ordenar formulario de solicitud de cita Para solicitar hora, los operadores de FACS se comunicarán con usted para finalizar los detalles de la cita.

Las citas no están garantizadas hasta que se confirmen e ingresen en FOM.

Los investigadores pueden consultar “Pautas para la clasificación” para obtener información más detallada.

Información de contacto:

Envíe un correo electrónico a Xiaojun Liu (Xiaojun.Liu@RoswellPark.org) o Jennifer Chinnici (Jennifer.Chinnici@RoswellPark.org).

Symphony A6 - Máquina de citometría de flujo
  • 5L, 23 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión (idénticos a Symphony A3)
  • Opciones de boquilla: 70 um (70 psi), 85 um (45 psi), 100 um (20 psi), 130 um (13 psi)
  • Opciones de clasificación: clasificación de tubos de 6 ml o 5 ml de 1.5 vías, clasificación de tubos de 4 ml de 15 vías, clasificación de placas (placas de 6 a 384 pocillos), portaobjetos

Láser

Filtro de paso de banda

Etiquetas fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 349 nm

UV379/28

BUV395, Spark UV 387, SBUV400

UV515/30

DAPI, BUV496, LD Azul, Zombie UV, SBUV510

UV586/15

BUV563, SBUV575, cFluor UV570

UV670/30

BUV661, SBUV665, cFluor UV670

UV740/35

BUV737, SBUV740, cFluor UV740

UV820/60

BUV805, SBUV795, cFluor UV790

Láser ultravioleta de 405 nm

V430 / 28

BV421, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V525 / 50

BV510, V500, AmCyan, Pac Orange, LD Aqua

V610 / 20

BV605, SBV600, cFluor V605, cFluor V610

V670 / 30

BV650

V710 / 50

BV711, SBV702, cFluor V715

V780 / 60

BV750, BV786, BV785, SBV780, cFluor V780

Láser azul de 488 nm

B515 / 20

FITC, BB515, GFP, AF488, cFluor B532, CFSE

B610 / 20

BB630, RB613, NovaBlue610

B710 / 50

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, RB670, cFluor B690

B780 / 60

BB790, RB780, NovaBlue 760, NovaBlue 800

Láser amarillo/verde de 561 nm

YG586/15

PE, RFP, tdTomato AF568, BYG584, cFluor BYG575

YG610/20

PECF594, PEDazzle594, PEeFluor610, PI, mCherry

YG670/30

PECy5, PECy5.5, NovaYellow 690, 7AAD

YG780/60

PECy7, NovaYellow 810, cFluor BYG781

Láser rojo de 637 nm

R670 / 30

APC, AF647, cFluor R659, LD Rojo lejano

R710 / 50

AF700, APC-R700, cFluor R720

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7, cFluor R780

FACS Aria II
  • 4L, 13 parámetros fluorescentes con 2 parámetros de dispersión (similar a Fortessa B y C)
  • La presión de la funda es ajustable de 2 a 75 psi.
  • Tamaños de boquilla de 100 micrones (también disponibles en 85 y 130 micrones)
  • Opciones de clasificación: clasificación de tubos de 4 vías, clasificación de placas (placas de 6, 12, 24, 48, 96 y 384 pocillos)

Láser

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser ultravioleta de 355 nm

U379 / 28

BUV395, Indo-1

U460 / 14

DAPI, Hoechst 33342, LD Azul, UV Zombie

Láser violeta de 405 nm

V450 / 50

BV421, BV480, DAPI, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

V530 / 30

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

Láser azul de 488 nm

B530 / 30

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

B575 / 25

PE, naranja, AF568

B610 / 20

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, PI

B710 / 50

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5, 7AAD, PEeFluor710

B780 / 60

PECy7, PEAF750

Láser rojo de 640 nm

R660 / 20

Vehículo blindado de transporte de personal, AF647

R730 / 30

AF700, APC-R700, DRAQ5

R780 / 60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7

Sony MA900
  • Disponible 24 horas al día, 7 días a la semana para usuarios capacitados reservando tiempo en el calendario de FOM
  • 4L–colineal para líneas láser de 488/561 nm y líneas láser de 405/638 nm
  • 12 parámetros fluorescentes y 2 de dispersión
  • Tamaños de boquilla disponibles: 70, 100 y 130 micrones.
  • Opciones de clasificación: clasificación de tubos de 4 vías, clasificación de placas (placas de 6, 12, 24, 48, 96 y 384 pocillos)

Láser

Filtro de paso de banda

Fluorescentes comunes (la lista no es exhaustiva)

Láser azul de 488 nm
Láser amarillo/verde de 561 nm

525/50

FITC, BB515, GFP, AF488, CFSE

585/30

PE, naranja, AF568

617/30

PECF594, PEAF610, PEDazzle594, PEeFluor610, ECD, PI

695/50

PerCPCy5.5, BB700, PerCP, PECy5, PECy5.5, 7AAD, PEeFluor710

785/60

PECy7, PEAF750

Láser violeta de 405 nm
Láser rojo de 640 nm

450/50

BV421, BV480, DAPI, Azul Pacífico, V450, EF450, SB436, AF405, Violeta LD

525/30

BV510, V500, AmCyan, LD Aqua

585/30

BV570

617/30

BV605

665/30

Vehículo blindado, AF647, BV650

720/60

AF700, APC-R700, DRAQ5

785/60

APC-Cy7, APC-AF750, APCH7, BV785, BV786

Perfiles/imágenes inmunitarios basados ​​en diapositivas

Fusión de fenocicladores

El Phenocycler Fusion es un analizador automatizado basado en inmunofluorescencia que realiza la visualización cíclica de 3 analitos inmunofluorescentes a la vez. Este proceso se puede repetir varias veces y se ha informado de la detección simultánea de más de 100 sondas inmunofluorescentes. Este proceso de obtención de imágenes es aplicable a FFPE y criosecciones de origen humano y murino. Hay disponible un catálogo de anticuerpos prevalidados en La empresa de biología espacial | Biociencias de AkoyaTambién está disponible la conjugación personalizada de anticuerpos para objetivos no disponibles en el catálogo. El uso del instrumento está restringido únicamente al personal de FIASR. Para obtener más información sobre la tecnología o programar un experimento, comuníquese con Orla Maguire (Orla Maguire@RoswellPark.org) o Hans Minderman (Hans.Minderman@RoswellPark.org).

 

Imágenes de células vivas

xCelligence-MP (Agilent)

El sistema de análisis de células en tiempo real (RTCA) de múltiples placas (MP) de Agilent xCELLigence proporciona un medio único y potente para monitorear las células en tiempo real, sin los posibles artefactos generados por el uso de marcadores. Esta medición no invasiva permite la detección de cambios en la adherencia, la morfología y la viabilidad sin la necesidad de sobreexpresar proteínas indicadoras y diana. Esto proporciona datos fisiológicamente relevantes durante todo el experimento.

Este instrumento se encuentra actualmente en una incubadora en el departamento del Dr. Brentjens en el quinto piso del Cancer Cell Center. Las solicitudes de capacitación y acceso al calendario deben discutirse con el Dr. Terence Purdon (Terence.Purdon@RoswellPark.org).

Las placas utilizadas para el instrumento están disponibles en FIASR a pedido por $66 cada una. Envíe un correo electrónico a FICSR@RoswellPark.org para organizar la recogida.

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Analizadores proteómicos

Intelliflex y Luminex 200

El sistema xMAP INTELLIFLEX® es un analizador multiplex de perlas de flujo que puede realizar hasta 500 pruebas en un solo volumen de reacción utilizando perlas magnéticas para capturar analitos solubles de plasma, suero y sobrenadantes de cultivos de tejidos.

El sistema Luminex® 200™ es una versión anterior de la tecnología Intelliflex que puede realizar hasta 100 pruebas en un solo volumen de reacción. Los kits de multiplexación para ambos instrumentos están disponibles comercialmente a través de varios proveedores, incluidos Millipore, BioRad, ThermoFisher y R&D Systems, con ensayos para muchas especies y tipos de muestras diferentes.

Nuevas solicitudes de ensayo: Póngase en contacto con Nitika Sharma (Nitika.Sharma@RoswellPark.org) para discutir los detalles del proyecto.

Maquina Isolight

El analizador Isolight de Isoplexis/Bruker realiza análisis automatizados de secretomas de células individuales vivas altamente multiplexados, análisis fosfoproteómicos y metabólicos altamente multiplexados de células individuales, así como análisis de proteínas en masa/población, todo en una plataforma y en un solo flujo de trabajo. Los datos completamente analizados se pueden obtener en 24 horas. IsoLight es ideal para la elaboración de perfiles integrales de las capacidades secretoras de diferentes tipos de células y de células en diferentes etapas de desarrollo o tratamiento. Haga clic en los enlaces para explorar los paneles de analitos humanos y murinos disponibles comercialmente para análisis en masa (Codeplex) o de células individuales (Isocódigo) análisis.

El método ELISpot mide cuantitativamente la frecuencia de secreción de citocinas de una sola célula. Se recubre una placa con anticuerpos para la citocina de interés. Se añaden células T con o sin estímulos. El anticuerpo de recubrimiento captura la citocina secretada y un segundo anticuerpo específico para la citocina se acopla a un sustrato cromogénico y se utiliza para la detección. Los resultados aparecen como puntos, y cada punto corresponde a una célula secretora de citocinas. La cantidad de puntos es igual a la cantidad de células secretoras de citocinas para un antígeno específico. El ensayo FluoroSpot modificado utiliza un anticuerpo marcado con fluorescencia en lugar de un sistema de sustrato de biotina-estreptavidina.

FIASR cuenta con el analizador FluoroCore CTL S6 que también puede realizar recuentos de PBMC. El FluoroCore está equipado con óptica y un canal fluorescente adicional que, junto con el conjunto de recuento celular LDA dedicado de CTL, puede contar docenas de muestras de PBMC en cuestión de minutos, incluida la documentación de viabilidad y el cálculo de volúmenes de resuspensión.

CTL proporciona varios kits para el lector en FIASR (kits de un solo color).

  • 1 láser (488 nm) con filtro de paso de banda 520 (FITC, Alexa Fluor® 488, naranja de acridina, sfGFP, GFP, Yo-Pro™, CFSC, Sytox™ Green)
  • Placa de 96 o 384 pocillos y placa de tira en formato de 96 pocillos
  • Análisis FluoroSpot de un solo color para una cuantificación precisa del analito secretado por célula a través de la función de imágenes HDR
  • Sirve como un lector de alto rendimiento para ensayos de citotoxicidad mediada por células.
  • Salida de datos estándar FCS
ELLA

El sistema de inmunoensayo automatizado ELLA realiza inmunoensayos en un cartucho microfluídico Simple Plex, lo que permite a los investigadores adquirir datos de ensayos validados altamente reproducibles con muy pocos pasos manuales y es la única plataforma de prueba autónoma para la ejecución simultánea de múltiples inmunoensayos basados ​​en ELISA.

Una vez que se carga una muestra, pasa por un canal de microfluidos que se une a la proteína de interés. A continuación, Ella elimina el analito no unido y añade un reactivo de detección. Debido a que cada canal tiene tres nanorreactores de vidrio (GNR) recubiertos con un anticuerpo de captura, obtendrá respuestas por triplicado para cada muestra. Las respuestas se generan a partir de la curva estándar calibrada de fábrica que viene con cada cartucho.

El volumen de ensayo requerido es de 25 μL o menos para ensayos personalizados de hasta 4 plex y los datos están listos en dos horas desde la preparación de la muestra. Los cartuchos están disponibles listos para usar o personalizables en Bio-Techne.

Analizadores metabólicos

Caballito de mar XFe96

El analizador de flujo extracelular Seahorse XFe96 rastrea y registra la tasa de consumo de oxígeno (OCR) y la tasa de acidificación extracelular (ECAR) que refleja la respiración mitocondrial y la glucólisis en tiempo real en formato de placa de 96 pocillos.

Los ensayos validados incluyen la prueba de estrés de glucólisis, la prueba de estrés celular mito, la prueba de flexión de combustible mito, el ensayo de tasa glucolítica, el ensayo de tasa de ATP, la prueba de fenotipo de energía celular y la medición de oxidación de ácidos grasos. También hay ensayos personalizados disponibles. Todos los kits se pueden ver en Agilent.

La normalización de los datos de Seahorse se puede facilitar mediante el recuento de células in situ utilizando el BioTek Cytation 5, que no requiere procesamiento adicional de la muestra. Cytation 5 es una plataforma de imágenes celulares multicanal capaz de realizar un recuento automático de células a partir de imágenes nucleares marcadas con fluorescencia tras la inyección de un colorante permeable a las células, como Hoechst 33342, a través del sistema Seahorse. El instrumento también realiza imágenes de campo claro de alto contraste, capturando imágenes de pocillos completos para proporcionar retroalimentación visual y control de calidad de las condiciones de siembra de células.

CalScreener es un programa de cribado de cal.

El calScreener™ de Symcel mide la actividad metabólica total de una muestra en tiempo real y en un tiempo de ejecución ilimitado que puede configurarse desde horas hasta meses. El calScreener mide directamente el calor producido como resultado de los procesos metabólicos en la muestra; la salida de energía se mide en μW.

El calScreener es una nueva incorporación a FIASR (junio de 2024) y agradecemos cualquier estudio para probar el instrumento. Póngase en contacto con Orla Maguire (Orla Maguire@RoswellPark.org) o Wei Luo (Wei.Luo@RoswellPark.org) para más información.

Analizador de partículas pequeñas

Vista Zeta

El analizador de partículas pequeñas ZetaView emplea el análisis de seguimiento de nanopartículas (NTA), que relaciona la velocidad del movimiento browniano de las partículas en suspensión líquida con el tamaño de las partículas. El NTA de ZetaView mide el perfil de distribución de tamaño de partículas pequeñas de aproximadamente 10 a 1000 nanómetros (nm) en suspensión. El ZetaView también es capaz de medir el potencial zeta de las partículas, que es una medida de la carga eléctrica en la superficie de las nanopartículas.

La aplicación principal del análisis NTA en Roswell Park es la medición de vesículas extracelulares (EV) y exosomas, vesículas derivadas de células con un diámetro entre 30 y 100 nm.

Los analizadores ZetaView están equipados con un láser de 488 nm o 405 nm para detectar partículas fluorescentes si se desea.

Los instrumentos ZetaView están disponibles las 24 horas del día, los 7 días de la semana para usuarios capacitados reservando tiempo en el calendario FOM.

Los investigadores interesados ​​deben comunicarse con nuestro operador principal Nitika Sharma (Nitika.Sharma@RoswellPark.org) o Hans Minderman (Hans.Minderman@Roswellpark.org) para consultas sobre proyectos y para discutir oportunidades de servicio completo o capacitación.

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Software de analisis

  • FCS Express 7.0: Roswell Park ofrece una licencia de red gratuita para todos los empleados de Roswell. Solicite el software a través de ServiceNow.
  • FlowJo 10: FIASR cuenta con dos estaciones de trabajo con FlowJo que están disponibles para su uso durante el horario comercial. Los investigadores principales son responsables de adquirir sus propias licencias si así lo desean.
  • WinList 9.0: Roswell Park tiene una licencia de red gratuita para todos los empleados de Roswell. Póngase en contacto con Joseph Hanson para organizar el acceso.
  • Modfit 4.0: Roswell Park tiene una licencia de red gratuita para todos los empleados de Roswell. Póngase en contacto con Joseph Hanson para organizar el acceso.
  • OMIQ: Roswell tiene varias licencias de un solo puesto disponibles para los empleados de Roswell. Se pueden realizar consultas a Hans Minderman.
  • IDEAS 6.2 (Amnis): FIASR tiene una licencia gratuita para todos los empleados de Roswell.
  • Amnis AI: Amnis AI trabaja con el software de análisis IDEAS 6.3 para ayudar a los investigadores a clasificar objetos mediante etiquetado asistido por ordenador y algoritmos de IA. FIASR cuenta con una estación de trabajo con Amnis AI e IDEAS v6.3, a la que se puede acceder durante el horario de oficina. Se pueden realizar consultas a Hans Minderman.
  • Image Pro Plus 6.3: Image Pro Plus 6.3 es un software de análisis de imágenes avanzado. Acepta una amplia variedad de formatos de archivos de imágenes. FIASR tiene una licencia de un solo usuario disponible para su uso durante el horario comercial.
  • ImageJ: ImageJ es un paquete de análisis de imágenes gratuito basado en Java desarrollado en los Institutos Nacionales de Salud. Los empleados de Roswell pueden solicitar el software a través de ServiceNow.

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Nuevas cuentas

FIASR utiliza FOM (Administrador de instalaciones en línea) como un calendario integrado, registro de instrumentos y sistema de facturación. Cada nuevo usuario deberá configurar una cuenta individual en FOM.

Cada laboratorio (o empresa) también necesitará una cuenta de grupo para iniciar sesión en el software informático de nuestros instrumentos analizadores. Solo se creará una cuenta por investigador principal. Para obtener más información sobre las cuentas nuevas, comuníquese con Orla Maguire.

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Educación

El personal de FIASR imparte varios cursos gratuitos para educar a la comunidad de Roswell Park y Buffalo sobre las técnicas que se emplean en nuestro recurso compartido. Las clases suelen durar entre una y tres horas.

OBLIGATORIO: Introducción a la citometría de flujo: Clase didáctica de 1.5 horas que introduce los conceptos básicos de la citometría de flujo, el diseño experimental, el análisis y describe las reglas a seguir en FIASR.

Tres sesiones de capacitación instrumental individual de 2 horas incluyen:

  1. Formación inicial utilizando nuestras muestras validadas
  2. El investigador trae sus propias muestras
  3. Solución de problemas y refuerzo de procedimientos correctos

Para aquellos instrumentos que están disponibles las 24 horas del día, los 7 días de la semana, se requiere una sesión de capacitación adicional con el personal de FIASR para el acceso fuera del horario laboral.

Se ofrecen otras clases opcionales según la demanda. Los doctores Minderman y Maguire también imparten el curso de posgrado. RPG564 Principios de citometría de flujo e imagen en el semestre de otoño, abierto a todos los estudiantes de posgrado y disponible para auditar si el espacio lo permite.

Contacte con Orla Maguire (Orla Maguire@RoswellPark.org) para más información.

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Centro de cáncer integral de Roswell Park

Ubicación y horario

Centro de cáncer integral de Roswell Park
Recurso compartido sobre análisis de flujo e inmunidad
Calles Elm y Carlton
Buffalo, Nueva York 14263

Ubicación:Centro de células cancerosas, 3er piso

Teléfono general de laboratorio: 716-845-3470
Correo electrónico general del laboratorio: FICSR@RoswellPark.org

Información de concesión

Por favor, reconozca el recurso compartido de análisis de flujo e inmunidad en su publicación de la siguiente manera:

Los servicios de citometría fueron proporcionados por el recurso compartido de análisis de flujo e inmunidad en el Roswell Park Comprehensive Cancer Center, con el apoyo parcial de la subvención de apoyo del NCI Cancer Center NCI P30CA016056 y NCI R50 R50CA211108.

Si utiliza el citómetro de flujo de imágenes ImageStream en sus publicaciones, reconozca la subvención de Shared Instrument que financió la adquisición de este instrumento de la siguiente manera:

El instrumento ImagestreamX-MKII fue financiado a través de la subvención para instrumentos compartidos del NIH S10OD018048.

Si utiliza el SONY MA900 en sus publicaciones, reconozca la subvención de Shared Instrument que financió la adquisición de este instrumento de la siguiente manera:

El clasificador SONY MA900 fue financiado a través de la subvención para instrumentos compartidos del NIH S10OD025183.

El Recurso Compartido de Análisis de Flujo e Inmune (FIASR) del Centro Oncológico Integral Roswell Park ofrece una amplia gama de tecnologías de vanguardia en diversas plataformas, incluyendo citometría de flujo e imagen, proteómica, metabolómica y técnicas de perfilado espacial, para apoyar a los investigadores de Roswell. El FIASR está reconocido por la Sociedad Internacional para el Avance de la Citometría (ISAC) como uno de los 14 Laboratorios de Recursos Compartidos a nivel mundial por su excelencia operativa y su adhesión a las mejores prácticas. El Centro Oncológico ha asumido un compromiso estratégico con la expansión de las terapias inmunitarias y celulares, lo que ha incrementado la demanda de apoyo de laboratorio para biomarcadores translacionales y la monitorización clínica de pacientes. El FIASR proporciona un recurso excepcional y esencial para explorar la biología subyacente a estas nuevas modalidades terapéuticas. Este recurso compartido mejora la eficiencia fiscal y operativa, así como el rigor y la reproducibilidad de los ensayos gracias a la aplicación de protocolos estandarizados de mantenimiento, operación y validación aprobados por la ISAC, lo que facilita la implementación de estas técnicas en el ámbito clínico. Además de servir a Roswell Park y a las instituciones de investigación locales, FIASR sirve como instalación central para varios ensayos clínicos multicéntricos de biofarmacia y del NIH.

Tecnologías y servicios de equipamiento

Además del software de adquisición de datos para los equipos enumerados en la Tabla, los siguientes paquetes de software de análisis están disponibles de forma gratuita para los usuarios: WinList y ModFit (Verity), FCSExpress (DeNovo), IDEAS (Amnis); AMNIS-AI; FlowJo (BD Bioscience), OMIQ, VisioPharm e ImagePro (MediaCybernetics). Se ha creado una red interna en un servidor administrado por el departamento de TI del Centro Oncológico con capacidad de almacenamiento expandible para la gestión de datos. Todos los investigadores dentro de las instalaciones tienen acceso protegido con contraseña a esta red desde sus PC de escritorio.

Otros equipos de apoyo incluyen: cámara frigorífica, campanas extractoras de gases, autoclaves y lavaderos de vidrio, 3 incubadoras de CO2, 3 campanas de cultivo de tejidos de flujo laminar Bioguard, centrífugas de sobremesa, microcentrífugas refrigeradas, microscopios invertidos y convencionales con contraste de fases, capacidad de fluorescencia y accesorios para cámaras digitales, PCR, congeladores de -80 y tanques de almacenamiento de N2 líquido, lector ELISA y equipos más pequeños necesarios para estudios celulares y moleculares.

Principales Servicios del FIASR: (i) Citometría de flujo convencional, de espectro completo y de masas, (ii) Clasificación, (iii) Citometría de flujo por imágenes, (iv) Análisis multiómico espacial, (v) Imágenes de células vivas, (vi) Ensayos de microesferas multiplex Luminex, (vii) Análisis del secretoma de una sola célula, (viii) Dimensionamiento de nanopartículas, (ix) ELISPOT, (x) ELISA, (xi) Educación y capacitación en todo lo anterior, (xii) Preparación y análisis de muestras para todo lo anterior.